Ni-IDA Agarose 6FF
货号:KTSM301
规格:{{info.Specification}} ({{info.Specifications}})
储存条件:4~8 ℃(避免冻存)
保质期:12个月
运输:冰袋运输
Ni-IDA Agarose 6FF说明书.pdf
联系电话
4009963188
促销价:{{info.PromotionPrice}} 价格:{{info.Price}}
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产品简介
Ni-IDA Agarose 6FF 是利用Ni2+与蛋白质侧链上的某些氨基酸(主要为组氨酸、半胱氨酸、色氨酸)相互作用而进行分离纯化,适用于6 x His / 10 x His 标签蛋白及与Ni2+具有相互作用的生物分子的分离纯化。
特点:
1. 快速、成本低。
2. 使用范围广、操作简单,适合重力柱和预装柱(蠕动泵或者层析系统)。
3. 多重选择,当Ni2+不能获得较好的应用时,可以螯合其它的金属离子进行使用(例如Cu2+、Zn2+、Fe2+、Co2+、Ca2+等)。
备注:当螯合Ca2+时,避免使用磷酸盐缓冲液(会形成沉淀)。
产品属性
项目 | 参数 |
基质 | 6%高度交联的琼脂糖 |
粒径范围 | 45-165µm |
结合载量 | >30mg (his标签蛋白)/ml(介质) |
pH稳定性 | 3-12(长期) 2-14(短期) |
化学稳定性 | 避免使用螯合剂(例如EDTA、EGTA)和还原剂(例如DTT和DTE) |
流速 | ≧300cm/h |
操作压力 | ≤0.3 MPa |
贮存溶液 | 含20%乙醇的PBS |
贮存温度 | 2-8℃ |
常见问题及解决方案
问题 | 原因分析 | 推荐解决方案 |
纯化时目的蛋白不与介质结合 或结合量较低 | 上样量过载,上样流速过快 | 降低上样量,降低上样流速 |
蛋白或脂类在介质中聚集影响结合 | 及时有效地清洗介质或更换新的介质 | |
表达条件过于剧烈,His标签被包裹,不能与介质结合 | 建议做一个空载体作为表达和纯化的对照,确定表达条件是否合适 | |
初始样品中没有组氨酸标签蛋白 | 通过基因序列或His标签抗体核实 | |
目的蛋白出现在流穿中 | 目标蛋白没有成功表达或样品与平衡液中pH及组分不正确 | |
洗脱组分别没有收集到目的蛋白 或只收集到少目的蛋白 | 目的蛋白没有与介质结合或结合量较少 | 先确认目标物是否与介质结合 |
蛋白折叠导致标签不能暴露 | 尝试使用变性条件 | |
洗脱时间不够 | 降低流速,延长洗脱液的保留时间 | |
洗脱体积过小 | 加大洗脱体积 | |
洗杂时,目的蛋白被洗下来 | 降低洗杂液中的咪唑浓度或者提高wash Buffer的pH | |
目标物在洗脱液条件下出现聚集沉淀 | 检测目标物在洗脱液条件(pH和盐浓度)下的溶解度和稳定性。可以尝试在洗脱液中加入一些添加剂:如0.2% Triton X-100或0.5% Tween-20 | |
目的蛋白可能是包涵体,没有在上清中 | 可以通过电泳检测裂解液分析上清中是否含有目的蛋白,包涵体蛋白需要按照包涵体蛋白的纯化方式 | |
重组蛋白表达量太低 | 优化表达条件 | |
重组蛋白和纯化介质之间的亲和力过高 | 降低Elution Buffer的pH值,或增加Elution Buffer中咪唑浓度;使用10~100 mM EDTA 溶液剥离镍离子,同时得到目的蛋白 | |
蛋白降解 | 在4℃下进行纯化操作,菌体破碎时添加一些蛋白酶抑制剂 | |
目的蛋白纯度较低
| 样品没有经过前处理 | 样品上柱前必须要经过离心或过滤 |
样品粘度过高 | 样品中含有高浓度核酸,加长破碎时间直至粘度降低,或者添加DNase I(终浓度5ug /ml),Mg2+(终浓度1mM),冰上孵育10~15min | |
洗杂不彻底 | 加大洗杂体积直至基线平稳并与平衡液一致 | |
杂质蛋白或脂类在介质中聚集沉淀 | 及时有效地清洗介质 | |
杂质与Ni2+具有较高的亲和力。 | 用其它类型介质进行纯化(如离子或分子筛) | |
柱料装填效果不佳 | 重新装填或购买 | |
杂质与介质出现非特异性吸附 | 适当选择添加剂降低非特异性吸附,可以尝试在样品中加入一些添加剂:如0.5%Triton X-100、1.0% Tween 20或50%甘油 | |
分离柱顶部有较大储样体积 | 重新装柱或降低储样体积 | |
介质中有微生物生长 | 介质使用完后,请及时正确保存介质 | |
样品中含有其他的组氨酸标签蛋白 | 通过调节PH值,或者咪唑浓度来优化洗杂条件。再使用其他的纯化手段(如离子交换,疏水等)进一步纯化洗脱组分 | |
填料颜色变浅或者变成白色 | 镍离子脱落或被剥离 | 填料重新挂镍离子 |
填料呈现褐色 | 缓冲液中有DTT | 对Ni IDA Beads,不能耐受DTT,建议使用Ni NTA Beads。使用时建议降低DTT的浓度至2 mM以下,或者改用巯基乙醇 |
上样过程中蛋白发生沉淀 | 操作温度过高 | 4℃下进行上样,在样品核所有缓冲液中添加稳定剂 |
蛋白沉降 | 改变缓冲液,ph与等电点相差至少一个单位 | |
介质载量下降 | 上样流速过快 | 降低上样流速 |
蛋白或脂类在介质中聚集,导致载量下降 | 及时清洗介质 | |
使用次数过多 | 更换新介质 | |
表达条件过于剧烈,His标签被包裹,不能较好与介质结合 | 建议做一个空载体作为表达和纯化的对照,确定表达条件是否合适 | |
色谱峰上升过陡 | 介质装填过紧 | 重新装柱 |
色谱峰上升过缓或拖尾 | 介质装填太松 | 重新装柱 |
柱床有裂缝或干涸 | 出现泄露或大体积气泡引入 | 检查管路是否有泄露或气泡,重新装柱 |
液流较慢 | 蛋白或脂类聚集 | 及时清洗介质或滤膜 |
蛋白沉淀在介质中 | 调整平衡液和洗脱液组分,以维持目标物的稳定性和介质的结合效率 | |
分离柱中微生物生长 | 所用试剂必须经过过滤和脱气; 样品上柱前必须离心或过滤 |