Ni-IDA Agarose 6FF

货号:KTSM301

规格:{{info.Specification}}

储存条件:4~8 ℃(避免冻存)

保质期:12个月

运输:冰袋运输

Ni-IDA Agarose 6FF说明书.pdf

联系电话

4009963188

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产品简介

Ni-IDA Agarose 6FF 是利用Ni2+与蛋白质侧链上的某些氨基酸(主要为组氨酸、半胱氨酸、色氨酸)相互作用而进行分离纯化,适用于6 x His / 10 x His 标签蛋白及与Ni2+具有相互作用的生物分子的分离纯化。

特点:

1. 快速、成本低。

2. 使用范围广、操作简单,适合重力柱和预装柱(蠕动泵或者层析系统)。

3. 多重选择,当Ni2+不能获得较好的应用时,可以螯合其它的金属离子进行使用(例如Cu2+、Zn2+、Fe2+、Co2+、Ca2+等)。

备注:当螯合Ca2+时,避免使用磷酸盐缓冲液(会形成沉淀)。

产品属性

项目

参数

基质

6%高度交联的琼脂糖

粒径范围

45-165µm

结合载量

>30mg (his标签蛋白)/ml(介质)

pH稳定性

3-12(长期) 2-14(短期)

化学稳定性

避免使用螯合剂(例如EDTA、EGTA)和还原剂(例如DTT和DTE)

流速

≧300cm/h

操作压力

≤0.3 MPa

贮存溶液

含20%乙醇的PBS

贮存温度

2-8℃


常见问题及解决方案

问题

原因分析

推荐解决方案

纯化时目的蛋白不与介质结合

或结合量较低

上样量过载,上样流速过快

降低上样量,降低上样流速

蛋白或脂类在介质中聚集影响结合

及时有效地清洗介质或更换新的介质

表达条件过于剧烈,His标签被包裹,不能与介质结合

建议做一个空载体作为表达和纯化的对照,确定表达条件是否合适

初始样品中没有组氨酸标签蛋白

通过基因序列或His标签抗体核实

目的蛋白出现在流穿中

目标蛋白没有成功表达或样品与平衡液中pH及组分不正确

洗脱组分别没有收集到目的蛋白

或只收集到少目的蛋白

目的蛋白没有与介质结合或结合量较少

先确认目标物是否与介质结合

蛋白折叠导致标签不能暴露

尝试使用变性条件

洗脱时间不够

降低流速,延长洗脱液的保留时间

洗脱体积过小

加大洗脱体积

洗杂时,目的蛋白被洗下来

降低洗杂液中的咪唑浓度或者提高wash Buffer的pH

目标物在洗脱液条件下出现聚集沉淀

检测目标物在洗脱液条件(pH和盐浓度)下的溶解度和稳定性。可以尝试在洗脱液中加入一些添加剂:如0.2% Triton X-100或0.5% Tween-20

目的蛋白可能是包涵体,没有在上清中

可以通过电泳检测裂解液分析上清中是否含有目的蛋白,包涵体蛋白需要按照包涵体蛋白的纯化方式

重组蛋白表达量太低

优化表达条件

重组蛋白和纯化介质之间的亲和力过高

降低Elution Buffer的pH值,或增加Elution Buffer中咪唑浓度;使用10~100 mM EDTA 溶液剥离镍离子,同时得到目的蛋白

蛋白降解

在4℃下进行纯化操作,菌体破碎时添加一些蛋白酶抑制剂

目的蛋白纯度较低

 

样品没有经过前处理

样品上柱前必须要经过离心或过滤

样品粘度过高

样品中含有高浓度核酸,加长破碎时间直至粘度降低,或者添加DNase I(终浓度5ug /ml),Mg2+(终浓度1mM),冰上孵育10~15min

洗杂不彻底

加大洗杂体积直至基线平稳并与平衡液一致

杂质蛋白或脂类在介质中聚集沉淀

及时有效地清洗介质

杂质与Ni2+具有较高的亲和力。

用其它类型介质进行纯化(如离子或分子筛)

柱料装填效果不佳

重新装填或购买

杂质与介质出现非特异性吸附

适当选择添加剂降低非特异性吸附,可以尝试在样品中加入一些添加剂:如0.5%Triton X-100、1.0% Tween 20或50%甘油

分离柱顶部有较大储样体积

重新装柱或降低储样体积

介质中有微生物生长

介质使用完后,请及时正确保存介质

样品中含有其他的组氨酸标签蛋白

通过调节PH值,或者咪唑浓度来优化洗杂条件。再使用其他的纯化手段(如离子交换,疏水等)进一步纯化洗脱组分

填料颜色变浅或者变成白色

镍离子脱落或被剥离

填料重新挂镍离子

填料呈现褐色

缓冲液中有DTT

对Ni IDA Beads,不能耐受DTT,建议使用Ni NTA Beads。使用时建议降低DTT的浓度至2 mM以下,或者改用巯基乙醇

上样过程中蛋白发生沉淀

操作温度过高

4℃下进行上样,在样品核所有缓冲液中添加稳定剂

蛋白沉降

改变缓冲液,ph与等电点相差至少一个单位

介质载量下降

上样流速过快

降低上样流速

蛋白或脂类在介质中聚集,导致载量下降

及时清洗介质

使用次数过多

更换新介质

表达条件过于剧烈,His标签被包裹,不能较好与介质结合

建议做一个空载体作为表达和纯化的对照,确定表达条件是否合适

色谱峰上升过陡

介质装填过紧

重新装柱

色谱峰上升过缓或拖尾

介质装填太松

重新装柱

柱床有裂缝或干涸

出现泄露或大体积气泡引入

检查管路是否有泄露或气泡,重新装柱

液流较慢

蛋白或脂类聚集

及时清洗介质或滤膜

蛋白沉淀在介质中

调整平衡液和洗脱液组分,以维持目标物的稳定性和介质的结合效率

分离柱中微生物生长

所用试剂必须经过过滤和脱气;

样品上柱前必须离心或过滤

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